對于糖的測定方法有很多，大致可分為三類

1.物理法，（1.旋光法,  2 .折光法,  3.比重法,）

2.物理化學法,(1.點位法, 2極普法, 3.光度法, 4.色譜法)

3.化學方法,(1.斐林氏法. 2.高錳酸鉀法. 3.碘量法. 4.鐵氰化鉀法. 5.蒽銅比色法. 6.咔唑比色法)

共計三大種，在測定其他碳水化合物時，往往是使其水解為糖再進行測定。

一.  總糖的測定

食品中的總糖主要指具有還原性的葡萄糖，果糖，戊糖，乳糖和在測定條件下能水解為

還原性的單糖的蔗糖（水解后為1分子葡萄糖和1分子果糖），麥芽糖（水解后為2分子葡萄糖）以及可能部分水解的淀粉（水解后為2分子葡萄糖）。還原糖類之所以具有還原性是由于分子中含有游離的醛基（-CHO）或酮基(=C=O)。

測定總糖的經典化學方法都是以其能被各種試劑氧化為基礎的。這些方法中，以各種根據斐林氏溶液的氧化作用的改進法的應用范圍最廣。在這里我們主要給大家介紹鐵氰化鉀法，蒽銅比色法，斐林氏容量法。斐林氏容量法由于反應復雜，影響因素較多，所以不如鐵氰化鉀法準確，但其操作簡單迅速，試劑穩定，故被廣泛采用。蒽銅比色法要求比色時糖液濃度在一定范圍內，但要求檢測液澄清，此外，在大多數情況下，測定要求不包括淀粉和糊精，這就要在測定前將淀粉，糊精去掉，這樣就使操作復雜化，限制了其廣泛應用。

（一）    鐵氰化鉀法

1.原理：樣品中原有的和水解后產生的轉化糖都具有還原性質，在堿性溶液中能將鐵氰化鉀還原，根據鐵氰化鉀的

濃度和檢驗滴定量可計算出含糖量。其反應為下：

C₆H₁₂O₆+6K₃[Fe(CN)₆] + 6KOH →(CHOH)₄·(COOH)₂ + 6K₄［Fe(CN)₆］+ 4H₂O

滴定終了時，稍過量的轉化糖即將指示劑次甲基蘭還原為無色的隱色體。

2，試劑

1）1％的次甲基蘭指示劑

2)鹽酸（水解作用）

3）10％和30％的NaOH溶液

4）1％鐵氰化鉀（貯存特色瓶，臨用前標定）

標定步驟

稱蔗糖1.0000g→定容500ml→取此液50ml→于100ml容量瓶→加hcl5ml→搖勻→65-70℃水裕15分鐘→取出冷卻→用30％NaOH中和→加水于刻度→倒入滴定管中→取10ml1％鐵氰化鉀于錐形瓶中→加10％NaOH2.5ml加12.5ml的水加玻璃珠顆粒→加熱至沸→保持一分鐘→加次甲基蘭1滴→立即以糖液滴足至藍色退去為止，記錄用量。

正式滴定比較滴定時少0.5ml糖液，煮沸1分鐘，加指示劑一滴，再用糖液滴定至蘭色褪去，計算鐵氰化鉀溶液的濃度。

A=(W·V)/(1000×0.95)

A：相當于10ml鐵氰化鉀溶液的轉化糖的量（克）

V：滴定時消耗的糖液的體積

W：稱取純蔗糖的量

1000：稀釋比

0.95：換算等數

3．操作方法

稀釋10g→用100ml水作溶液→于250ml容量瓶→加20％醋酸鉛10ml→至沉淀完為止→加10ml10％NA2HPO4→至不在產生沉淀為止→加水至刻度→過濾－取濾液50ml→于100ml容量瓶中→按鐵氰化鉀標定法進行轉化，中和及滴定

計算糖含量

總糖（以轉化糖計%）= (A × 1000)/(W·V)× 100                                            

A：相當于10ml鐵氰化鉀溶液的轉化糖的重量，

W：樣品的重量

V：滴定時樣液消耗的體積

4．實驗應注意

（a）達終點時，過量的轉化糖將指示劑次甲基蘭還原為無色的隱色體，隱色體容量受空氣中氧所氧化，很快又變

成指示劑的顏色。

（b）整個過程應在低溫電爐上進行，滴定要速度，否則終點不明顯

（c）糖與硫酸反應脫水生成羥甲基呋喃甲醛，生產物再與蒽銅縮合成蘭色化合物，其顏色深淺與溶液中糖的濃度

成正比，單、雙糖等糖類都直接于試劑發生作用，因此不需要水解。

（二）蒽銅的比色法

1.原理：糖與硫酸反應脫水生成羥甲基呋喃甲醛，生產物再與蒽銅縮合成蘭色化合物，其顏色深淺與溶液中糖的濃

度成正比，可比色定量。

2.試劑

（1）    硫酸鋅溶液：溶解500g化學純硫酸鋅于500ml水中

（2）    亞鐵氰化鉀溶液：溶解10.6g化學純亞鐵氰化鉀于100ml水中

（3）    0.2％蒽銅試劑：溶解蒽銅0.2g于100ml95％硫酸中，置棕色瓶中冷暗處保存

（4）    0.1％葡萄糖液：準確稱干燥葡萄糖0.1000g 定容100ml

3.操作方法

（1）    標準曲線繪制

（2）    100ml容量瓶編號 

沸水浴加熱6分鐘，取出冷卻→用1cm比色杯→610nm測定吸光度→作出以吸光度為橫坐標，糖液濃度為縱坐標的準

曲線

（3）樣品測定

稱10g樣品→于100ml熱水加入500ml容量瓶中－加硫酸鋅5ml→沸水浴5分鐘→取出再搖動下加亞鐵氰化鉀5ml，→冷卻→定容500ml→過濾→吸濾液25ml→于250ml容量瓶→定容250ml→取稀釋液1ml，于比色管中→加10ml蒽銅試劑→搖勻→水浴加熱6分鐘→冷卻→比色

試驗注意

1，樣液必須清澈透明，加熱后不應有蛋白質沉淀

2，樣品顏色較深時，可用活性炭脫色后再進行測定

3，此法與所用的硫酸濃度和加熱時間有關

4，所取糖液濃度在1-2.5mg/100ml之間

二.  還原糖的測定方法

還原糖包括葡萄糖、果糖、麥芽糖，在葡萄糖分子中含有淤青的醛莖，在果糖分子中含有淤青的酮莖，在乳糖中和

麥芽糖中含有淤青的半縮羧莖，因此都有還原性。在測定還原糖時一般測定總糖時所有將糖類水解為轉化糖再測定

的方法都可用來測定還原糖。

（一）斐林氏容量法

1.此法的原理、試劑、方法與總糖的測定方法相同。只是樣品溶液不必以過轉化，而是直接取濾液進行滴定，濾液進行滴定，濾液中的還原糖含量以在0.2-0.5%為好，又能通過增減樣品量或改變稀釋倍數來調節。10毫升費林氏A、B液混合時理論上相當還原糖量如下：

葡萄糖（無水）果糖或轉化糖尿病  0.0500克

乳糖尿病                        0.0678克

麥芽糖                          0.0807克 

2試劑

（1）    斐林氏A液，稱69.8g cp硫酸銅于100ml水中，過濾備用

（2）    斐林氏B液，稱34.6g.cp濃流鋅鈉和100gcp NaOH于1000ml水中，過濾備用

3方法

稱取樣品10-20g：制備與轉化同鐵氰化鉀法。將樣液倒入滴管中，吸取A,B液準備預滴定

預滴定：

吸A、B液各5ml→從滴管中加15ml樣液→加熱至沸→繼續滴加樣液→至蘭色變潛→加3滴次甲基蘭→在1分鐘內滴定到終點

達到終點時，稍微過量的轉化糖，將蘭色的次甲基蘭染色體還原為無色的隱色體，而顯出氧化亞銅的紅色，去堿性條件下加熱糖的產物是復雜的。

去堿性中斷裂是由于堿度不同，加熱時間不同，生產不等的碎片，這種碎片給后面滴定帶來誤差，而且，這種碎片與糖沒有化合量的關系，所以，Lanecrol-Eynon Method 作出數據檢索表

正式滴定：

吸A,B液各5ml→于三角瓶→加比預定量少0.5-1.0ml樣液→2分鐘內要求沸騰1分鐘→加3滴指示劑→用樣液滴定蘭色消失

總沸騰時間為3分鐘，即滴定在3分鐘完成。

計算：

還原糖＝( F·V₂)/(W·V₁)×100

F：轉還糖回數，即與10ml斐林氏試液相當的轉化糖毫克數，

V₁：樣品試液總體積

V₂：樣品試液滴定量

W：樣品重量

在測量乳糖制品時，若蔗糖與乳糖的含量比超過3：1時，則應與滴定量中加上相關表中（課本中表9-8）校正值后在進行計算

我們舉例如下：

如果標準果糖溶液度為每100ml溶液含糖262.5mg。對于10ml斐林試液從9-5可以查得果糖液滴定應為20ml。如果不是20ml，可先算出A,B液 校正等數。然后進行計算

再如標準糖溶液濃度為每100ml溶液含糖199.3ml，對于10ml A,B液 從9-4中查到，糖液滴定量應為 25.00ml，若有出入可校正。如果要求不高，可省略校正步驟但要求1％得 測定誤差，則省略校正。另外有時候并未根據檢索表計算樣含糖量，但對A,B液進行標定，以使確定相當得 還原糖量。這種誤差為0.5％。下面我們講標定量A,B液

準確準確稱取烘干冷卻得 A.R蔗糖1.5g→用水溶解稱取250ml容量瓶中→定容→吸50ml于100ml 定量瓶中→加HCL5ml→再65-70攝氏度水裕15分鐘→冷卻→用30％NaOH中和→定容

準確吸A,B液 各5ml于三角瓶中→加水約50ml玻璃珠三粒→加熱至沸→保持1分鐘→加指示劑1滴→再煮1分鐘→立即用糖液滴定至蘭色褪去，紅色出現即為終點

正式滴定，先加入比預滴定時少0.5ml左右得糖液煮沸1分鐘→加指示劑1滴→再煮沸1分鐘→繼續滴至終點

計算： A＝W*V/500×0.95

A：相當于10ml斐林氏A、B液的轉化糖的量

W：稱取蔗糖的質量

V ：滴定蔗糖的量

500：稀釋比

0.95：換算等數

最后計算：

總糖（還原糖）以轉化糖計%=（A*1000/W*V）*100

A：同上

W：制取樣品的量

V：滴定是時樣品消耗量

1000：是稀釋倍數（100/50*500）

1.預測定的目的：對樣品溶液中還原糖濃度有一定要要求（0.1%左右），測定時樣品溶液的消耗體積應該與標定葡萄糖標液的消耗體積相近，通過測定了解樣品濃度是否合適，濃度過大或過小應該加以調整，使測定時消耗樣品溶液量在10毫升左右；二是通過測定可知道此溶液的大概消耗量，以便在正式的滴定時，預先加入比實際用量少1毫升左右的樣液，只留下1ml左右的樣液在續滴定時加入，以便保證在1分鐘內完成續滴定工作，提交預測定的準確度。

2.此實驗影響測定結果的主要操作因素是反應液堿度、熱源強度，煮沸時間和滴定速度一般煮沸時間短消耗糖多，反之，消耗糖液少，滴定速度過快，消耗糖量多，反之，消耗糖量少。另外溶液堿度愈高，二價銅的還原愈快，因此必須嚴格控制反應的體積，使反應體系堿度一致。熱源一般采用800W電爐，反應液在2秒內沸騰。

（二）KMNO4（高錳酸鉀法）

1．原理，還原糖在堿性溶液中使銅鹽還原成氧化亞銅，在酸性條件下，氧化亞銅能使硫酸鐵還原為硫酸亞鐵，再用KMNO4溶液滴定硫酸亞鐵，即可標出還原糖的量。

2. 操作方法

（1）樣品處理

a. 乳糖：包括乳制品以及含蛋白質的冷食類

 稱樣2-5g（液體樣25~50ml）→于250ml容量瓶→加水50ml→加A液10ml+1N NaOH 4ml →定容→靜置30秒→過濾→棄去初液→可測還原糖及蔗糖用。

b. 低酒度飲料：麥精露、各類汽酒等飲料。

先暴氣除CO₂→取100ml→于蒸發皿中→用1 N NaOH 中和→沸水浴蒸至原體積四分之→轉入250ml容量瓶→加50ml水→搖勻→（加A液10ml→加1 N NaOH 4ml）→加水至刻度→靜置30秒→過濾。

c. 含多量淀粉的食品：嬰兒食品、糕干粉、寶寶樂、代乳粉、餅干、面包、糕點等

 稱樣10-20g→250ml容量瓶→加水200ml→45度水浴加熱1小時→不停搖動→冷后加水至刻度→靜置→吸出清夜200ml于另一容量瓶（250ml）→加A液10ml+1N NaOH 4ml→靜置30秒→過濾。

d. 汽水、果露、國產七種可樂及可口可樂

 處理CO₂→吸樣液100ml→于250ml容量瓶→加水至刻度→可測還原糖及蔗糖。

（2）測定方法

取50ml處理的樣液→于400ml燒杯→加A、B液各25ml→加熱在4min左右沸騰→再煮2min→趁熱抽濾→用60℃水洗燒杯和沉淀→直到洗液不成堿性→將抽濾的紙（或者石棉）及Cu₂O→轉入原來燒杯→用25ml硫酸鐵溶液沖洗抽濾瓶→使沖洗液全部洗入原燒杯中→加水25ml→使Cu₂O溶解→用0.1N KMnO₄標液滴定至微紅色，同時用50ml水按上述方法做空白實驗。

 （3）計算

3. 注意事項：

（1）煮沸后的溶液顯紅色不顯蘭色，則表示糖量高，可減少取樣體積。

（2） 在洗滌Cu₂O的整個過程中應使沉淀上層保持一層水層，以隔絕空氣，避免Cu₂O被空氣中的氧所氧化。

（3）此法適用于各類食品中還原糖的測定，有色樣液不受限制，準確度高，重現性好。準確性和重現性都優于直接滴定法，但操作復雜、費時，需使用特制的高錳酸鉀法糖類檢索表。

（二）直接滴定法（斐林氏溶液法）

1.     原理

樣品經過處理除去蛋白質等雜質后，加入鹽酸，在加熱條件下使蔗糖水解為還原性單糖，用直接滴定法測定水解后

樣品中的還原糖總量。

2. 試劑

3. 方法

（1）    取過量樣品進行提取，放入250ml容量瓶，加5ml醋酸鋅和5ML亞鐵氰化鋅，定容，靜止30分后過濾，濾液備用。

（2）    測定

樣品預滴定：

取A、B液各5ml于三角瓶中加水10ml，玻璃珠數粒，加熱在2分內沸騰，趁熱滴定，滴定到蘭色褪去，記錄用量。

正式滴定：

取A、B液各5mL于三角瓶→加玻璃珠三粒→從滴定管直接加比預滴定時少0.5-1.0ML樣液，在2分沸騰，趁熱滴定蘭

色褪去，記錄，取三次平均值計算結果。

三．蔗糖的測定

1．原理：樣品除蛋白質后，其中的蔗糖經鹽酸水解轉化為還原糖，用還原糖的測定方法，確定樣品中蔗糖的含

量。

實際上測定還原糖包括兩部分：一是樣品中原有的還原糖、二是蔗糖經酸水解后的還原糖。

2．方法

吸還原糖樣品處理稀釋液50mL→于100ML容量瓶→加→于68-70度水浴上15分→冷卻→加甲基紅2滴→中和→定容→

取此溶液按還原糖的測定方法測定。

2．計算

蔗糖%=F(100/V2-100/V1) /(W╳50/250╳1000)╳ 100╳0.95

式中：F：10ml斐林氏試液相當于轉化糖的質量mg。

V₁：測定時消耗未經水解的樣品稀釋體積ml

V₂：測定時消耗經過水解的樣品稀釋體積ml

w：原測定還原糖時樣品的重量(G)

1000：將毫升換算成克

0.95：分子的蔗糖經水解后成為2分子的還原糖(一分子的葡萄糖和一分子的果糖)蔗糖的分子量為342,后來成為2×180.則342/360=0.95.所以轉化糖換算到蔗糖應乘以0.95.

四.紙上層析法.

在食品中,糖的組分較為復雜,在淀粉糖漿中含有麥芽糖、葡萄糖、麥芽三糖、麥芽四糖等多種組分.對于這些食品中的各種組分,不可能用化學分析方法進行測定,而用物理分析方法進行測定.

紙層析應用于糖類的分離分析,它利用混合物中各組分物理化學性質的差別,使各組分以不同速度移動而達到分離.

比移值R_f==組分展開的距離/溶劑展開的距離

糖的RF值的規律為:

單糖>雙糖>三糖 

戊糖>己糖 

酮糖>醛糖

實驗室常用的展開劑:

正丁醇:HA_c:H₂O==4:1:5

常用的顯色劑:

0.1N A_gNO₃:NH₄OH(SN)=1:1(靈敏度高，但斑點易擴散)

A_gNO₃/丙酮:NaOH/乙醇=1:1(克服上面缺點)

（顯色劑書上給出許多,同學們可以自己看）

樣品的處理可采用常規法如:糖的提取和蛋白質的除去可看前面講的。

根據R_f值可求出各種糖的R_f與標準樣品的R_f值進行比較,可確定出糖的種類,也可進行定量,用斑點光密度定量法直接在濾紙上測定.用斑點面積校正進行定量。