答:可以。對于霉菌等真菌需培養7 天進行保存,而酵母菌需培養三天將孢子洗脫下來進行保存,保存管中的小瓷珠可以作為介質來吸附孢子和菌絲,相當于砂土保存法中砂土作為載體起到的作用。
2、所有的菌都能保存嗎?如果不是的話,什么樣的菌可以保存?什么樣的菌不可以保存?
答:可以。菌種保存的原理是預防或減緩DNA 復制時自發突變導致菌種退化,因此要創造代謝不活潑的狀態,而菌種保存時使菌種進入休眠態(孢子、芽孢),并創造干燥、低溫、缺氧、缺營養的環境,創造的環境越接近此狀態,所保存的菌種的時間就越長,所以從原理上講,所有菌種都可用這種方法保存, 但需要注意的是,苛刻菌(如流感嗜血桿菌、腦膜炎萘瑟氏菌)等特殊細菌保存時,需-80℃或更低溫度保存,才可以做到更長期的保存。
3、能用菌種保存管永久保存菌株嗎?
答:溫度越低,保藏效果越好。從目前的試驗數據及實際保存效果來看,-20℃可保存1-5 年,-80℃或液氮中可保存5-10 年,不同菌種及不同的保存溫度保存時間會有所不同(例如:大腸、沙門等常規細菌-20℃我們目前可以保存到6年)。但需要注意的是所保存的菌種需每年抽檢進行生化特征的鑒定,確定菌株無變異。
4、菌種保藏時為什么要進行分離純化?
答:分離純化后才能獲得單一菌株,單一菌株進行菌種保藏才有意義,防止菌種交叉污染和變異,這也是菌種保存的基本原則。
5、菌種保存管對于平板來說,對挑選菌落個數有要求嗎?還是將整個平板的菌落全部刮入管中?
答:對于要保存的細菌一般是要進行2-3 次的純化,要保證一個平板上的菌是由單一菌落傳代而來的,所以在細菌保存的過程中,為了保證制備的菌懸液可以達到3-4MCF,是可以將整個平板的的細菌全部刮到管中的,如果平板長的比較滿一般半個平板就夠用,具體用量也根據菌種的不同有所差異,如霉菌、酵母菌在保存時,不適合用濁度法。
6、對于液體培養基培養的純菌,是否也可以用咱們的菌種保存管?如果可以的話,怎么操作?
答:是可以用的,如果液體培養基能保證是純菌的話,可以直接離心,棄掉上清,然后把保存管中液體吸進去充分混勻,然后再轉移到菌種保存管中,整個過程要注意無菌操作。不過,一般菌種保存管最好選擇平板菌落進行保存,因為液體培養基中有雜菌是不易觀察出來的。
7、為什么在菌種保存時,要上下顛倒?為什么不能旋搖?
答:上下顛倒,可使菌懸液充分混勻,菌株充分、均勻地吸附到小瓷珠上,旋搖不利于菌懸液充分混勻,反而會使菌株全部沉淀于管底。
8、為什么在使用時要將管內的液體盡可能多的吸出?
答:吸出液體可避免反復凍融形成的冰晶對菌株的損傷,加快復蘇的過程,因此,要盡可能的將與菌種混勻后的保存液吸凈。而常用的甘油法,在復蘇的過程中需用水浴鍋快速溶解,在此過程中,對菌株傷害較大。
9、在使用后,菌種保存管的保存環境?需要-80℃冰箱嗎?
答:本公司菌種保存管采用的是低溫冷凍保存法,因此,使用后,需放置低溫環境,如-20℃、-80℃或液氮中保存,而且溫度越低,保存效果越好。用戶需根據菌種的保存要求選擇具體保存溫度。
10、為什么說,如果有條件的話,菌種保存管最好置于-80 冰箱或液氮中?
答:因為,貯存在-70℃以下低溫中能減少冰晶形成,可極大降低冰晶形成對細菌的傷害,同時可為被保存的菌種創造更低的代謝環境,從而延長細菌保存的時間。
11、為什么在取用菌株時,操作過程要求快速?
答:菌種保存復蘇的原則,要求慢凍快融,之所以要求快速,是因為在菌種復蘇的過程中, 長時間的溶解過程會對所保存的菌種造成損傷,而我們經過改良的保存方法最大程度的避免復蘇所造成的影響,但我們還是建議遵循菌種的保存復蘇原則,保證所復蘇菌種的復蘇率。
12、將菌株反復凍存,到底對菌株有什么影響?
答:低溫會使菌株細胞內的水分形成冰晶,從而引起細胞結構尤其是細胞膜的損傷。細胞體積大者一般要比較小者對低溫更為敏感,而無細胞壁者則比有細胞壁者敏感。如果放到低溫(不是一般冰箱)進行冷凍時,會產生冰晶,冰晶呈針狀,極易導致細菌的嚴重損傷。用電鏡觀察,可見細菌的核膜上有大量針尖樣小孔,當從低溫下移出并開始升溫時,冰晶又會變大,故反復凍存,會對菌株造成極大損傷。
13、為什么有時候菌種的保存效果不佳?
答:1、可能是由于保存后未將保存液吸盡,反復凍融形成冰晶損傷菌株細胞,影響了菌株活性。
2、確定所保存的菌種是否為對數生長期的菌種,我們建議普通菌種保存為18小時內的新鮮菌種,而霉菌需要待孢子出現后保存其孢子。
14、該產品能否用于菌種的運送,如果可以在什么條件下運送?
答:就目前試驗數據而言,我們建議可主要用于普通細菌的短期運送,對于厭氧菌在運送時最好讓其處于厭氧環境下,2-8℃運送不超過5 天。另外需要說明的是如弧菌屬和綠膿桿菌需要常溫運送,其對2-8℃溫度極其敏感。